APLICACION DE UNA NUEVA TÉCNICA PARA DETERMINAR LOS NIVELES DE INFECCIÓN
DE Varroa jacobsoni EN COLMENAS DE Apis
mellifera
Laboratorio
de Artrópodos. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad Nacional
de Mar del Plata. Funes 3350. (7600) Mar del Plata. E-mail: jamarca@mdp.edu.ar
En
la actualidad, la apicultura de todo el mundo enfrenta un grave problema
sanitario: el provocado por el ácaro
ectoparásito Varroa jacobsoni. Su
ciclo de vida es complejo y afecta tanto a las abejas adultas como a las crías
en desarrollo. Como consecuencia de ello, su poder patogénico es muy alto,
causando año tras año, enormes pérdidas en el número de colmenas
(Marcangeli, en prensa). El desarrollo de las infecciones es muy variable ya
que depende entre otros, de factores climáticos (De Jong, et al., 1984; Ritter y De Jong, 1984), características propias de
las abejas (Camazine, 1986; Otten, 1988; Schousboe, 1990) y de variaciones
relacionadas directamente con el parásito (Marcangeli, 1994; Fries et
al., 1986). En consecuencia, resulta de suma importancia implementar una
metodología simple que permita predecir el grado de parasitismo en las
colonias de abejas.
Hasta
la actualidad, se han empleado diversos métodos, con diferentes resultados,
para diagnosticar la enfermedad (Ritter, 1981, De Jong, et
al., 1982, Rademacher, 1985, Calatayud y Verdú, 1993). De todos ellos, el
más ampliamente utilizado es el basado en la determinación de la prevalencia
parasitaria (De Jong et al., 1982). Investigaciones recientes, (Marcangeli, en prensa)
demostraron que esta técnica resulta poco precisa debido al tipo de
distribución que adoptan los parásitos en el interior de las colmenas. En su
reemplazo, propone en concordancia con Calatayud y Verdú (1995) el diagnóstico
de las poblaciones del ácaro mediante el análisis de la mortalidad natural.
Sin embargo, este método presenta una difícil aplicación por parte de los
productores, dado que consume mucho tiempo y para su estimación es necesario
la adopción de pisos especiales en las colmenas que incrementan los costos de
producción.
El objetivo de este trabajo es presentar una variante
de la técnica propuesta por De Jong (1982), la cual resulta adecuada y de fácil
aplicación para estimar el número de ácaros presentes en las colonias de
abejas.
El
estudio fue llevado a cabo en una apiario comercial ubicado en Mar del Plata
(Provincia de Buenos Aires) durante el mes de marzo de 1999. Los muestreos se
realizaron sobre 20 colmenas tipo Langstroth de un híbrido de Apis
mellifera mellifera y Apis mellifera
ligustica. Las colmenas de estudio presentaban al inicio del trabajo
similares proporciones de abejas adultas, cría y reservas de miel y polen.
Estos parámetros fueron evaluados siguiendo las metodologías propuestas por
Rogers et al. (1983) y Acorti et al.
(1986).
Para
registrar la prevalencia parasitaria en las colmenas, se utilizó primeramente
la técnica propuesta por De Jong et al.
(1982) que consiste en tomar de cada colmena, un cuadro de cría y barrer
sobre un frasco con alcohol y agua (1:1) aproximadamente 200 abejas.
Posteriormente, se realiza el recuento de abejas y ácaros y se expresa su
relación en porcentaje. Transcurrida una semana, se aplicó sobre las mismas
colonias una variación de esta técnica. Dicha variación consiste en tomar
la misma muestra, pero a partir de tres cuadros de cría.
Una
vez finalizada la toma de datos, y con el fin de determinar el número total
de ácaros, la totalidad de las colmenas fueron provistas con dos tiras plásticas
de Apistán® en su formulación original que presenta una efectividad
promedio del 99%. Los ácaros muertos se recolectaron de los pisos y se
registró su número por colmena.
Finalmente,
se realizaron análisis de regresión y varianza entre las mediciones de
prevalencia parasitaria, utilizando ambas técnicas, y el número de ácaros
totales calculado a partir de los recuentos posteriores al tratamiento
acaricida. Dado que la distribución de porcentajes no se ajustan a una
distribución normal, los datos provenientes de las prevalencias fueron
transformados a arcoseno de su raíz cuadrada (Zar, 1984).
La
Tabla I muestra el número total de ácaros muertos por efecto del acaricida
Apistán®. Se observa que las colonias mostraban niveles de infección muy
variables, siendo su promedio 170,95 ± 186,69 ácaros (
x ± SD, rango 14-662). La prevalencia parasitaria tomada sobre un solo
cuadro fue variable, no observándose ninguna correlación con el número
total de ácaros presentes en las colonias (r= 0,040, p<0,05). La
prevalencia tomada sobre tres cuadros de cría también mostró valores
variables. Sin embargo, éstos fueron muy superiores, notándose además una
tendencia de relación directa entre este índice y el número total de parásitos
(r= 0,62, p<0,05).
Los
resultados de los análisis de regresión efectuados se muestran en las
figuras 1 y 2. Para el caso de la prevalencia sobre un solo cuadro, no se
demostró ningún tipo de relación (Fobs= 0,029; Fcrit= 0,866; p<0,05; n=
20; g.l.= 1,18; r2 = -0,053). En contraposición, se observó una
clara relación entre la prevalencia parasitaria tomada sobre tres cuadros y
el tamaño poblacional de parásitos. Esta relación acepta la hipótesis de
regresión lineal y puede ser expresada como y = 26,983 x – 162,68 (Fobs=
11,52; Fcrit= 0,0032; p<0,05; n= 20; g.l.= 1,18; r2 = 0,356).
En
trabajos anteriores se ha demostrado que el
mejor índice del nivel de infección de ácaros en las colonias de
abejas es la mortalidad natural (Calatayud y Verdú, 1993; 1995, Marcangeli,
en prensa). Para su determinación, es necesario realizar conteos periódicos
del número de ácaros muertos en cada colonia y ajustarlo de acuerdo a las
curvas de regresión obtenidas. Sin embargo, este método resulta poco práctico
dado que es necesario visitar las colmenas un mayor número de veces, consume
por lo tanto un mayor tiempo y se deben utilizar pisos de colmenas especiales
que aseguren la recolección de ácaros, evitando pérdidas.
Los
resultados presentados en este trabajo reafirman observaciones previas
(Marcangeli, en prensa) que indican que la prevalencia parasitaria tomada
sobre un solo cuadro de cría no constituye un buen índice del grado de
infección de las colmenas. Los parásitos no muestran una distribución
uniforme sobre sus hospedadores, sino que adoptan distribuciones del tipo
contagiosa (Crofton, 1971; Anderson y Gordon, 1982; Cabaret y Morales, 1983;
Marcangeli, op. cit.). Esta agregación
implica la presencia de zonas en las colmenas con una alta concentración de
ácaros y zonas libres de ellos (Eguaras et
al., 1994; Marcangeli, en prensa). Considerando
estos factores, la posibilidad de error es muy grande y dependerá del cuadro
de cría tomado para la determinación de la prevalencia, pudiendo tanto
sobrestimar como subestimar el nivel de infección en las colmenas. Mediciones de este parámetro sobre una misma colmena en
distintas horas del día y/o sobre distintos cuadros han arrojado valores muy
disímiles, lo que confirma la debilidad de esta técnica (Marcangeli,
observación personal).
Contrariamente,
este trabajo muestra que la prevalencia parasitaria tomada en base a tres
cuadros de cría presenta un buen ajuste al modelo de regresión y por ende es
representativo del número de ácaros totales presentes en las colonias de
abejas. El efecto de agregación de los parásitos es aparentemente eliminado
al no tomar la muestra de un solo cuadro y considerando ahora las distintas
zonas de las colmenas.
Esta
técnica presenta, además, la ventaja de ser simple, no dañino para las
colonias y de fácil aplicación por los propios productores apícolas,
quienes podrán disponer de un método efectivo para determinar el estado de
las poblaciones de V. jacobsoni.
Este
trabajo contó con el apoyo financiero de la International Foundation for
Science (IFS) Suecia, Grant B/2355-2F.
Accorti, M., R. Barbattini & S. Marchetti. 1986. La diagnosi de il controllo di Varroa
jacobsoni Oud in campo: Proposta di unificazione delle metodologie nelle
prove sperimentali. Apicoltura, 2: 165-185.
Anderson, R. & D. Gordon. 1982.
Processes influencing the distribution of parasite numbers within host
populations with special emphasis on parasite-induced host mortalities.
Parasitology,
85:
373-398.
Cabaret,
J. & G. Morales. 1983.
Strategie comparée des infestations naturelles par Teladorsagia cicumcincta et
T. trifurcata chez les ovins. Parassitologia,
25: 171-177.
Calatayud,
F. & M. Verdú. 1993. Hive debris counts in honeybee colonies: a method to estimate the size
of small populations and rate of growth of the mite Varroa jacobsoni Oud. (Mesostigmata: Varroidae). Exp.
Appl. Acarol., 17: 889-894.
Calatayud,
F. & M. Verdú. 1995. Number of adult female mites Varroa
jacobsoni Oud. on hive debris from honey bee colonies artificially
infested to monitor mite population increase (Mesostigmata: Varroidae). Exp.
Appl. Acarol., 19: 181-188.
Camazine,
S. 1986. Differential reproduction of the mite Varroa
jacobsoni (Mesostigmata: Varroidae) on Africanized and European honey bees
(Hymenoptera: Apidae). Ann. Entomol.
Soc. Am., 79: 801-803.
Crofton, H. 1971. A quantitative approach to
parasitism. Parasitology,
62:
179-193.
De
Jong, D., P. De Jong & L. Gonçalves. 1982. Weight loss and other damage to developing
worker honeybees from infestation with Varroa
jacobsoni. J. Apic. Res., 21:
165-167.
De
Jong, D., L. Gonçalves & R. Morse. 1984.
Dependence on climate of the virulence of Varroa
jacobsoni. Bee World, 65, 117-121.
Eguaras,
M., J. Marcangeli & N. Fernández. 1994.
Influence of the parasitic intensity on Varroa
jacobsoni Oud. reproduction. J.
Apic. Res., 33: 155-159.
Fries,
I., A. Aarhus, H. Hansen & S. Korpela. 1986. Comparison of diagnostic methods for detection of low infestation
levels of Varroa jacobsoni in honey
bee (Apis mellifera) colonies. Exp.
Appl. Acarol., 10: 279-287.
Marcangeli,
J. 1994.
Reproducción diferencial del ácaro ectoparásito Varroa
jacobsoni Oud. (Acari: Gamasida: Varroidae) en celdas de cría de obreras
y zánganos de Apis mellifera L.
(Hymenoptera: Apidae). Tesis Doctoral,
Univ. Nac. Mar del Plata, 129
p.
Marcangeli,
J. Análisis
comparativo de dos métodos utilizados para determinar el tamaño poblacional
de Varroa jacobsoni (Acari: Varroidae) en colmenas de Apis
mellifera (Hymenoptera: Apidae) en el sudeste de la Provincia de Buenos
Aires. Rev. Soc. Entomol. Arg. (en
prensa)
Otten,
C. 1988. A comparison of Varroa population dynamics in different subspecies of Apis
mellifera L. Proc.
Present status of Varroatosis in Europe
and progress in the Varroa mite control. Cavalloro,
R. (Eds.): 101-106.
Rademacher,
E. 1985. Ist eine Befallsprognose aus dem naturlichen
Totenfall von Varroa jacobsoni
moglich? Apidologie, 16: 395-406.
Ritter,
W. 1981. Varroa
disease of the honeybee Apis mellifera.
Bee World, 62: 141-153.
Ritter,
W. & D. De Jong. 1984. Reproduction of Varroa
jacobsoni in Europe, the Middle east and Tropical South America. Z.
Angew. Entomol., 98: 55-57.
Rogers,
L., R. Gilbert & M. Burgett.
1983. Sampling honeybee colonies for brood production: a double sampling
technique. J. Apic. Res., 22:
232-241.
Schousboe,
C. 1990. Seasonal variations in the duration of capped
stage in the development of bee brood. Proc.
Internat. Symposium on Recent Research on Bee Pathology, Gent. Ritter, W.
(Ed). 111-118.
Zar,
J. H. 1984.
Biostatistical analysis. 2nd Edition. Prentice Hall, Englewood Cliffs, New Jersey. 718
pp.
Figura 1;
Prevalencia parasitaria de Varroa
jacobsoni tomada sobre un solo cuadro de cría en colmenas de Apis
mellifera. Línea= curva de regresión (Coeficiente de correlación=
0,0402); círculos= prevalencias parasitarias observadas.

Figura 2;
Prevalencia parasitaria de Varroa
jacobsoni tomada sobre tres cuadros de cría en colmenas de Apis
mellifera. Línea= curva de regresión (Coeficiente de correlación=
0,624); círculos= prevalencias parasitarias observadas.

Y= 26,98 x – 162,68
Tabla I: Número de ácaros muertos
por el acaricida y prevalencia parasitaria (en porcentaje y transformada según
arcseno raíz cuadrada) obtenida sobre uno y tres cuadros de cría.
|
Colmena |
Número total de ácaros |
Prevalencia parasitaria un cuadro (%) |
Prevalencia parasitaria un cuadro transformada |
Prevalencia parasitaria tres cuadros (%) |
Prevalencia parasitaria tres cuadros transformada |
|
1 |
298 |
1,5 |
7,034 |
5,2 |
13,18 |
|
2 |
149 |
4,5 |
12,240 |
2,91 |
9,82 |
|
3 |
20 |
5,0 |
12,920 |
1,5 |
7,03 |
|
4 |
40 |
2,6 |
9,279 |
9,78 |
18,22 |
|
5 |
662 |
3,0 |
10,007 |
13,0 |
21,13 |
|
6 |
312 |
1,8 |
7,710 |
4,94 |
12,84 |
|
7 |
21 |
3,6 |
10,937 |
3,22 |
10,33 |
|
8 |
20 |
0,5 |
4,054 |
2,89 |
9,87 |
|
9 |
166 |
3,8 |
11,241 |
2,61 |
9,29 |
|
10 |
82 |
2,1 |
8,332 |
11,3 |
19,64 |
|
11 |
145 |
1,4 |
6,795 |
1,89 |
7,90 |
|
12 |
15 |
7,5 |
15,894 |
2,6 |
9,27 |
|
13 |
110 |
2,5 |
9,097 |
4,01 |
11,55 |
|
14 |
14 |
3,4 |
10,625 |
4,6 |
12,38 |
|
15 |
199 |
2,4 |
8,912 |
2,6 |
9,27 |
|
16 |
99 |
4,3 |
11,967 |
3,5 |
10,78 |
|
17 |
117 |
12,1 |
20,355 |
5,3 |
13,30 |
|
18 |
41 |
1,1 |
6,023 |
1,43 |
6,86 |
|
19 |
294 |
8,4 |
16,847 |
6,54 |
14,81 |
|
20 |
615 |
4,5 |
12,247 |
11,5 |
19,82 |